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目的基因的PCR扩增及其扩增产物的鉴定
1.实验原理
PCR(聚合酶链反应)是一种在体外模拟DNA复制过程的技术。它利用DNA模板、引物、四种脱氧核糖核苷酸(dNTPs)和DNA聚合酶,通过循环的温度变化,实现特定DNA片段的快速扩增。
2.实验材料
DNA模板:含有目的基因的DNA片段。
引物:设计针对目的基因两侧的特异性引物。
dNTPs:四种脱氧核糖核苷酸混合物。
TaqDNA聚合酶:耐热DNA聚合酶,用于在PCR反应中合成新的DNA链。
缓冲液:提供适宜的pH和离子强度,以维持DNA聚合酶的活性。
灭菌水:用于配制反应体系。
3.实验步骤
a.设计引物:根据目的基因序列,使用专业软件设计特异性引物,并考虑引物的长度、GC含量和Tm值。
b.配制反应体系:按照试剂说明书和实验设计要求,准确配制PCR反应混合物。
c.进行PCR扩增:
初始变性:将混合物在9498°C下变性510分钟,使DNA双链解旋为单链。
循环扩增:设置3040个循环,每个循环包括以下三个步骤:
变性:9498°C,3060秒,使DNA双链解旋。
退火:根据引物的Tm值设定温度,一般为5065°C,3060秒,使引物与模板DNA结合。
延伸:72°C,12分钟,DNA聚合酶沿模板链延伸,合成新的DNA链。
终末延伸:72°C,510分钟,确保所有的DNA片段都完全延伸。
d.结束反应:将PCR产物置于4°C或20°C保存。
扩增产物的鉴定
1.凝胶电泳分析
a.准备琼脂糖凝胶:根据需要分离的片段大小,选择适当浓度的琼脂糖凝胶。
b.样品制备:将PCR产物与上样缓冲液混合。
c.电泳分析:将样品加载到凝胶孔中,进行电泳。通常使用1×TAE缓冲液,电压为100150V。
d.结果观察:电泳结束后,使用紫外灯或成像系统观察凝胶,记录目的条带的大小和亮度。
2.序列分析
a.纯化PCR产物:使用DNA纯化试剂盒将PCR产物纯化。
b.送检测序:将纯化的PCR产物送至测序公司进行序列分析。
c.结果比对:将测序结果与已知基因序列进行比对,验证扩增片段的正确性。
3.酶切分析
a.选择合适的限制性内切酶:根据目的基因序列,选择能够识别并切割特定序列的酶。
b.酶切反应:将PCR产物与限制性内切酶混合,进行酶切反应。
c.电泳分析:酶切后,通过凝胶电泳分析酶切片段的大小和数量。