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蓝白斑菌落pcr扩增DNA电泳实验报告

PCR扩增反应的操作实验报告

实验原理:

以单链DNA为模板，4种dNTP为底物，在模板3’末端有引物

存在的情况下，用酶进行互补链的延伸，多次反复的循环能使微量

的模板DNA得到极大程度的扩增。在微量离心管中，加入与待扩增

的DNA片段两端已知序列分别互补的两个引物、适量的缓冲液、微

量的DNA膜板、四种dNTP溶液、耐热TaqDNA聚合酶、Mg2+等。反

应时先将上述溶液加热，使模板DNA在高温下变性，双链解开为单

链状态；然后降低溶液温度，使合成引物在低温下与其靶序列配

对，形成部分双链，称为退火；再将温度升至合适温度，在TaqDNA

聚合酶的催化下，以dNTP为原料，引物沿5’→3’方向延伸，形

成新的DNA片段，该片段又可作为下一轮反应的模板，如此重复改

变温度，由高温变性、低温复性和适温延伸组成一个周期，反复循

环，使目的基因得以迅速扩增。因此PCR循环过程为三部分构成：

模板变性、引物退火、热稳定DNA聚合酶在适当温度下催化DNA链

延伸合成。

实验步骤:一、PCR反应的条件

PCR反应条件为温度、时间和循环次数。

1．温度与时间的设置

（1）变性温度与时间：变性温度低，解链不完全是导致PCR失

败的最主要原因。

一般情况下，93℃～94℃lmin足以使模板DNA变性，若低于

93℃则需延长时间，但温度不能过高，因为高温环境对酶的活性有

影响。此步若不能使靶基因模板或PCR产物完全变性，就会导致

PCR失败。

（2）退火（复性）温度与时间：退火温度是影响PCR特异性的

较重要因素。变性后温度快速冷却至40℃～60℃，可使引物和模板

发生结合。由于模板DNA比引物复杂得多，引物和模板之间的碰撞

结合机会远远高于模板互补链之间的碰撞。退火温度与时间，取决

于引物的长度、碱基组成及其浓度，还有靶基序列的长度。对于20

个核苷酸，G+C含量约50%的引物，55℃为选择最适退火温度的起点

较为理想。

（3）延伸温度与时间：TaqDNA聚合酶的生物学活性：70～

80℃，150核苷酸

/S/酶分子；70℃，60核苷酸/S/酶分子；55℃，24核苷酸/S/

酶分子；高于90℃时，DNA合成几乎不能进行。

（4）PCR反应的延伸温度一般选择在70～75℃之间，常用温度

为72℃，过高的延伸温度不利于引物和模板的结合。PCR延伸反应

的时间，可根据待扩增片段的长度而定，一般1kb以内的DNA片

段，延伸时间1min是足够的。3～4kb的靶序列需3～4min；扩增

10kb需延伸至15min。延伸进间过长会导致非特异性扩增带的出

现。对低浓度模板的扩增，延伸时间要稍长些。

2．循环次数

循环次数决定PCR扩增程度。PCR循环次数主要取决于模板DNA

的浓度，一般的循环次数选在30～40次之间，循环次数越多，非特

异性产物的量亦随之增多。

二、PCR扩增产物分析

PCR产物是否为特异性扩增，其结果是否准确可靠，必须对其

进行严格的分析与鉴定，才能得出正确的结论。PCR产物的分析，

可依据研究对象和目的不同而采用不同的分析方法。

1．凝胶电泳分析：PCR产物电泳，EB溴乙锭染色紫外仪下观

察，初步判断产物的特异性。PCR产物片段的大小应与预计的一

致，特别是多重PCR，应用多对引物，其产物片断都应符合预讦的

大小，这是起码条件。

（1）琼脂糖凝胶电泳：通常应用1～2%的琼脂糖凝胶，供检测

用。

（2）聚丙烯酰胺凝胶电泳：6～10%聚丙烯酰胺凝胶电泳分离效

果比琼脂糖好，条带比较集中，可用于科研及检测分析。

2．酶切分析：根据PCR产物中限制性内切酶的位点，用相应的

酶切、电泳分离后，获得符合理论的片段，此法既能进行产物的鉴

定，又能对靶基因分型，还能进行变异性研究。实验结果：无