实验12质粒dna的提取.pptx
文本预览下载声明
实验七 质粒DNA的提取 (碱法); 实验目的
实验原理
实验仪器、材料与试剂
实验步骤
实验结果及讨论 ;实验目的;实验原理;结构的三大要素:
多克隆位点
选择标记(耐药性,LacZ)
独立的复制单位
种类:
质粒
噬菌体
酵母人工染色体(YAC)
反转录病毒载体
表达载体等;在碱性条件(pH 12.5)下,线性染色体DNA的双螺旋结构解开而变性,质粒DNA的氢键虽然断裂但两条互补链彼此缠绕,紧密结合在一起。当加入乙酸钾恢复至中性时,染色体DNA之间交联形成不溶性结构,而质粒DNA分子很快复性,离心时染色体DNA与细胞碎片一起被沉淀出来,而质粒DNA则留在上清液中。
用异丙醇或乙醇沉淀后洗涤,可得到较纯的质粒DNA。;实验仪器、材料与试剂 ;(二) 材料 ;(三) 试剂 ;2. SolutionⅠ
50 mmol/L 葡萄糖
25 mmol/L Tris.·Cl (pH 8.0)
10 mmol/L EDTA (pH 8.0)
高压灭菌后,4℃保存备用。
3. SolutionⅡ(现用现配制)
0.2 mol/L NaOH
1% SDS
;4. Solution Ⅲ(100 ml)
5mol/L KAc 60 ml
冰醋酸 11.5 ml
水 28.5 ml
配制成的溶液Ⅲ含3 mol/L钾盐、5 mol/L醋酸 (pH 4.8)。
5. 氨苄青霉素(Amp)
用无菌水配制成100 mg/ml 溶液,置-20℃冰箱保存备用。 ;6. 胰RNA酶
将胰RNA酶(RNA 酶 A)溶于10 mmol/L Tris.Cl (pH 7.5)、15 mmol/L NaCl中, 配成10 mg/ml的浓度,于100℃加热15分钟,缓慢冷却至室温,分装成小份保存于-20℃。
7. 氯仿,乙醇 ,70%乙醇。
8.TE缓冲液
10mM Tris.HCl (pH7.4)
1mM EDTA (pH8.0);实验步骤 ;6. 12,000rpm,离心5min,将上清移至1个新EP管中,注意所取体积。
7. 加入2倍体积无水冰乙醇混匀(注意动作轻),-20℃沉淀 10min。
8. 12,000 rpm离心3 min,弃上清,加入1ml 70%乙醇振荡漂洗一次,再10000 rpm离心2min,去上清。
9.沉淀于-20℃保存备用。;Biospin 质粒DNA 小量提取试剂盒(实际用)
?
操作过程
1. 将1~1.5ml 过夜培养的细菌菌液加入1.5ml 离心管中。
2. 于10,000rpm离心30 秒,并弃去上清液。
如有需要,可多次重复步骤1、2,以收集更多细菌菌体。但勿过量,以免影响提取质粒的质量。
3. 加250μl Resuspension Buffer,重悬细菌体沉淀。
重悬后应该没有细菌团块。;4. 加250μl 细胞Lysis Buffer,轻柔颠倒4~6 次。
不要剧烈振动,以防止基因组DNA 被剪切。注意不要让反应持续超过5 分钟。
5. 加350μl Neutralization Buffer,立即轻柔颠倒离心管4~6 次。
溶液应该出现絮状物,但不会出现局部沉淀。
6. 于13,000rpm离心10 分钟。
如离心机转速不够可延长离心时间,直至形成紧密的白色沉淀。
7. 将步骤6 离心后得到的上清液转移到Spin column 内。于6,000rpm离心1 分钟,并弃去接液管内液体。
;8. 向Spin column 内加650μl Wash Buffer,于12,000g 离心30~60 秒,并弃去接液管内液体。
9. 重复第8 步一次。
10. 再次于12,000rpm 离心1 分钟,然后将Spin column 转移到无菌的1.5ml 离心管中。如不进行该步离心,则无法保证离心柱内残液被彻底清除。
11. 向Spin column 内加20μl Elution Buffer、去离子水或TE 溶液,并于室温静置1 分钟。
可根据实验的实际需要决定洗脱液用量。
;12. 于12,000rpm离心1 分钟,1.5ml 离心管内溶液中含有质粒DNA。
13. 提取的质粒DNA 可直接用于各类下游分子生物学实验,如果不立即使用,请保存于-20℃。
;实验结果及讨论
显示全部