高三生物二轮复习课件微专题红细胞.pptx

准备：课本、学案、一模试卷，完成基础知识默写

细胞凋亡受到严格的由遗传机制决定的程序性调控，所以它是一种程序性死亡辅助性T细胞减少阻碍了浆细胞和细胞毒性T细胞的产生(或辅助T细胞受损，既会影响体液免疫，也会影响细胞免疫)思路1：从样品中提取RNA，逆转录得cDNA，用HIV核酸特异性引物进行PCR，电泳检测PCR产物。结果：有目的条带思路2：利用抗HIV抗体，与血液样品进行抗原－抗体杂交实验。结果：产生杂交带特异性高，免疫保护时间长；二次免疫抗体产生更快、更多

水体中的雌激素能使斑马鱼细胞产生E蛋白，激活卵黄蛋白原(vtg)基因的表达，因此斑马鱼可用于监测环境雌激素污染程度。为了实现可视化监测，科学家将图1中的vtg基因与图2中Luc基因载体连接，形成vtg-Luc基因重组载体，成功培育了转基因斑马鱼，当极微量雌激素污染水体，斑马鱼的肝脏就发出荧光。Luc表示荧光素酶基因(无启动子),Kan为卡那霉素抗性基因,ori为复制起点,BamHI、BcII、HindⅢ、BsrGI为限制酶，→表示转录方向。(1)为使vtg基因与Luc基因载体形成重组载体，选用限制酶??????????切割Luc基因载体可降低“空载”概率。通过PCR技术获取vtg基因时，需设计合适的引物。依据图示信息，推测引物1包含的碱基序列为5ˊ????????3ˊ。?(写出已知的所有碱基序列)(2)将“vtg-Luc基因重组载体”导入大肠杆菌中进行扩增，为便于筛选，应将大肠杆菌接种在含??????????的培养基中；转基因成功的斑马鱼只在肝脏中发出荧光指示污染.其原因是?????????。(4)进一步研究发现，E蛋白能与vtg基因启动子的特定序列结合，启动该基因的表达。已知vtg基因启动子含区域1和区域2，为研究E蛋白的结合位点，设计如下实验：用限制酶将启动子切割成含区域1和区域2的两个片段，将两个酶切片段分别与Luc基因载体连接，连接位点位于Luc基因的上游，形成两种重组载体。将重组载体分别导入斑马鱼的???????????，待发育成熟后，往水体中添加???????????进行检测。

体内基因治疗，顾名思义，是将治疗基因直接输送到患者体内，通过特定的载体系统，如病毒载体或非病毒载体，将基因精准送达目标细胞，实现基因修复或替换。这种方法具有操作简便、全身性治疗潜力等优势，尤其适用于某些全身性疾病的治疗。体外基因治疗，则先将患者的细胞（如造血干细胞、T细胞等）从体内分离出来，在实验室环境中进行基因修饰，再将修饰后的细胞重新回输到患者体内。这种方法能够更精确地控制基因编辑的过程，减少脱靶效应，提高治疗的安全性和有效性，尤其在癌症免疫治疗和遗传性疾病治疗方面展现出巨大潜力。

荧光蛋白和荧光素酶的区别荧光素酶(Luciferase)是自然界中能够催化荧光素产生生物发光的酶的统称，其中最有代表性的是来自萤火虫体内(Firey)和海肾(Renilla)体内的两类萤光素酶，分别命名为F-Luciferase和R-Luciferase。荧光蛋白和荧光素酶是在基因工程中广泛使用的两个报告基因(reportergene),除了来源不同之外，他们主要在发光原理、检测方法和用途方面均有不同。发光原理荧光蛋白例如GFP是用蓝紫光激发即能发出肉眼清晰可见的绿色荧光,无需任何底物或辅助因子；而荧光素酶本身不发光，是通过与底物进行化学反应后释放出光子。检测方法GFP发出的荧光很容易通过紫外灯、共聚焦显微镜(confocalmicroscope)、荧光显微镜或荧光激活的细胞分拣器(fluoresenceactivatedcellsorter,FACS)分析而在活细胞中被检测到。在普通荧光显微镜下,以蓝光或紫光激发,再选择合适的滤光片,就可以看到细胞发出的GFP荧光。荧光素酶的活性定量检测通常使用液闪仪或生物发光测定仪(luminometer)，在标准的反应条件下,加入超量的底物,在一定的时间间隔内荧光的闪烁总数与同样品中存在的荧光素酶的活性总量成正。另外,也可以采用光自显影法对荧光素酶进行定性检测。用途荧光蛋白可与蛋白的N端或C端融合表达而不影响各自功能，可用于观察融合蛋白在细胞内的位置，可以方便地从大量细胞或组织中筛选出来。但荧光蛋白的定量分析仅限于阴性/阳性两个结果，而荧光素酶就能够定量地得到表达量/表达水平的数值，鉴于此，研究者利用荧光素酶开发出一套极其灵敏且使用方便的基因报告系统，被广泛用于转录因子结合位点与启动子活性分析、miRNA与靶基因相互作用分析、活体成像、信号转导等领域。

一抹迷人的高原红高原红细胞增多症（简称“高红症”）是由于高原低氧引起的红细胞过度代偿性增生（即红细胞增生过度）的一种慢性高原病