双荧光素酶系统实验操作步骤与方法_课件.ppt

双荧光素酶报告系统;报告基因 (reporter gene):是一种编码可被检测的蛋白质或酶的基因，也就是说，是一个其表达产物非常容易被鉴定的基因。 一般的，把报告基因的编码序列和基因表达调节序列相融合形成嵌合基因，或与其它目的基因相融合，从而利用它的表达产物来标定目的基因的表达调控。 在动物基因表达调控的研究中，报告基因被广泛应用。如绿色荧光蛋白(GFP）和荧光素酶。;荧光素酶（Luciferase）：是能够催化不同底物氧化发光的一类酶的统称，哺乳细胞无内源性荧光素酶。 荧光素酶报告基因的优点 蛋白不需要翻译后加工，所以一旦翻译立即产生报告活性。 在所有的化学发光反应中，它的光产物具有最高的量子效率，因而非常灵敏。另外，在宿主细胞及检测试剂中均检测不到背景发光。 检测快速，每个样品只需几秒钟。; 构建成荧光素酶报告质粒。然后转染细胞，适当刺激或处理后裂解细胞，测定荧光素酶活性。通过荧光素酶活性的高低判断刺激前后或不同刺激对感兴趣的调控元件的影响。;同时，为了减少内在的变化因素（如：培养细胞的数目和活力的差别，细胞转染和裂解的效率等）对实验准确性的影响，将带有海肾荧光素酶基因（Rinilla luciferase）的质粒（phRL-TK）作为对照质粒与报告基因质粒共转染细胞，提供转录活力的内对照，使测试结果不受实验条件变化的干扰。 在测量过程中，当加入荧光素酶检测试剂II (LARII)时产生萤火虫荧光信号，这样先测量萤火虫荧光素酶报告基因。定量萤火虫荧光强度之后，再在同一样品中加入Stop Glo? 试剂，将上述反应淬灭，并同时启动海肾荧光素酶反应，同时进行第二次测量。;A．检测前相关试剂配制 1. 1X PLB裂解缓冲液配制：将4×体积水或PBS加入1×体积5X PLB裂解缓冲液。（使用前在室温平衡1X 缓冲液，平衡需2-3 min）。 2. Luciferase Assay Reagent II (LAR II) 配制：将Luciferase Assay Buffer II加入Luciferase Assay Substrate充分混合后，分装，置于-20℃避光保存。（一次配好，分装成小管，避免反复冻融），使用前将配好的LAR II从-20℃拿出，并平衡至室温（需20-30min）。 ;;B．样品制备 1. 仔细地将生长???养基从待检细胞孔中吸出。用1XPBS漂洗细胞2-3次。此过程必须仔细，并尽量将漂洗用PBS 吸尽（防止细胞掉落）。 2. 24 孔板每孔加入100-150μl 1X 裂解缓冲液PLB以覆盖细胞。然后将24孔板置摇床振摇20-30min以保证裂解缓冲液完全裂解细胞。;C．双荧光素酶检测（Promega GLOMAX） (注：系统运行时请勿触摸操作屏) 1. 重新设定系统：Tools Settings Reset 2. 双荧光素酶检测程序的设定： Protocols Run Promega Protocol DLR-O-INJ OK 3.将50μl LAR II加入1.5ml EP管中（专用的进口EP管），取10μl 细胞裂解液加入装有LAR II的1.5ml EP管中，吹打2-3次混匀（尽量不要吹出气泡），置于检测仪，点击“Measure” 开始读数（为萤火虫荧光素酶反应强度）。（使用前LAR II要混匀，并平衡到室温） ;;;;;