检验科标本采集与运送要求精简.pptx

检验科标本采集与运送要求精简第1页/共19页 全程质量控制和质量管理,包括：实验前(分析前) 、实验中(分析中) 和实验后(分析后)三个阶段,其中实验前质量控制是全面质量控制的前提。国内外均有报道,检验结果误差中70%左右来自实验前(分析前),而且实验前(分析前)误差是仪器、试剂、质控品和标准品等再好也无法解决的。因此,必须注意做好实验前质量管理。第2页/共19页 我院检验科分析前质量控制主要取决于 患者的准备；标本的采集；标本的储存；标本的运送；这四个环节，这需要临床各科室的支持和配合！ Garbage in ,Garbage out!第3页/共19页 一 、血液检验标本采集一般要求：病人在采血前24h内应避免运动和饮酒，不宜改变饮食习惯和睡眠习惯。 门诊病人提倡静坐15分钟后再采血。按照血标本采集部位的不同，分为静脉血、动脉血和毛细血管血三种。 第4页/共19页 （一）静脉血采集注意事项 1 、止血带或压脉器：采集静脉血时，止血带压迫静脉时间不宜过长,以不超过 40秒为宜2 、采集静脉血应尽可能避免在输液同时取血3、 避免溶血、杂质污染：注射器抽取时避免特别用力抽吸和推注4、应根据检查的目的选择不同的试管以及采血量，抗凝管收集血标本后，立即将试管轻轻颠倒5～6次，使血液与抗凝剂充分混匀。一般生化（红色帽）、免疫检验（橙色帽）、分子生物实验室检测（粉红色帽）用干燥非抗凝管收集标本，采样量3-5ml。血常规检验用EDTAK2抗凝管（紫色帽）收集标本，采样量2毫升.第5页/共19页 凝血四项、3P试验、 G6PD、糖化血红蛋白测定用蓝色帽 抗凝管收集标本，采样量达到试管刻度2ml处, 血沉用 黑色帽 抗凝管收集标本，采样量达到试管刻度2ml处，混匀。血液粘度测定需用 绿色帽 抗凝管抽取5ml血量送检。第6页/共19页 5、多个组合检测项目同时采血时应按下列顺序采血：血培养→无添加剂管→凝血管→有添加剂管6、标本采集后须立即送检，放置过久影响检验结果。低温条件2-8℃或室温运输，1小时内送检。血培养不能低温保存需放置在常温下4小时内送检！7、一定要做好三查七对，确保标本跟病人吻合第7页/共19页 （二）动脉血标本的采集方法、注意事项 先抽取少量肝素，湿润注射器后排尽。（或者使用专用血气针）。一般需要1毫升左右，拔针后立即将针尖斜面刺入橡皮塞或者专用凝胶针帽隔绝空气。将血气针轻轻转动，使血液与肝素充分混匀，立即送检。 第8页/共19页 二、尿液标本采集 一般尿液检查应留取新鲜尿液置清净、干燥容器中立即送检，从排出到检测应在 2h内完成， 根据不同的检查目的留取不同时间段的尿液，留取24小时尿注意添加防腐剂:甲苯（或二甲苯）：较常用，如24h尿糖定量、尿蛋白定量测定。100ml尿液中加0.5-1ml。 甲醛：用于尿液有形成分检查，用量为1-2ml 40%甲醛/24小时尿。可用于24h尿无机离子定量及艾迪氏计数测定 c. 盐酸：分析测定甾体激素及其衍生物或儿茶酚胺以及含氮物质时常选用。100ml尿液中加0.5-1ml，或24小时尿液加5-10ml。 微生物检验的标本应取尿道排出的中段尿并立即送检。 标本应避免污染三、 粪便常规检验标本采集粪便常规检验留取5g左右,粪便标本应留取新鲜粪便的病理成份，如粘液、血液（红色或黑色部份）；若无病理成分，可各部位取材。不得被其他异物污染，不能从尿布上取粪便标本，不得从尿壶或便盆中取标本。第9页/共19页 四、脑脊液标本采集１、由临床医师行腰椎无菌穿刺术采集标本。２、采集后的脑脊液分别收集于 3 个无菌试管中，每管 1—2 ml，第一管送微生物室作细菌培养，第二管送生化室做化学分析和免疫学检查,第三管送临检室作一般性状及显微镜检查（脑脊液常规）。第10页/共19页 五、胸、腹水以及浆膜腔积液标本采集１、由临床医师行无菌穿刺术，最好留取中段液体于消毒容器内，立即送检。２、为防止出现凝块、细胞变性、细菌破坏自溶等，标本中应加入抗凝剂。常规及细胞学检查宜用EDTA-2K抗凝，生化检查标本宜用肝素抗凝。六、前列腺和精液检查前列腺液标本应由临床医师进行前列腺按摩术采集精液采集最好在实验室附近，室温应控制在 20～35℃,采集标本前禁欲 3～5 天．采集精液前排净尿液。可用手淫法或其它方法，将一次射出的全部精液直接排入洁净、干燥的容器内（禁止使用避孕套）。第11页/共19页 七 、微生物检验标本采集微生物学检验标本的正确采集、运送及处理，与细菌的培养、鉴定结果有十分密切的关系。要做到 1、尽量在抗生素应用前采集标本，以提高阳性检出率和避免漏检；2、标本采集应严格执行无菌操作；3、及时送检第12页/共19页 1、血液及骨髓培养标本① 、应在抗生素治疗前，严格无