新城疫病毒单克隆抗体的制备及双抗体夹心ELISA方法的建立.docx

新城疫病毒单克隆抗体的制备及双抗体夹心ELISA方法的建立

一、新城疫病毒单克隆抗体的制备

1.免疫原的制备

以新城疫鸡源强毒株ND35作为免疫原，通过多次免疫Balb/C小鼠来刺激其免疫系统。通常进行四次免疫，每次间隔一定时间，以确保小鼠体内产生足够的抗体反应。

2.细胞融合与筛选

取免疫小鼠的脾细胞与骨髓瘤细胞SP2/0进行融合，利用融合细胞培养技术筛选出能够分泌特异性抗体的杂交瘤细胞。这一步骤是制备单克隆抗体的核心，需要通过严格的筛选和优化来获得高效且特异的杂交瘤细胞株。

3.抗体纯化与鉴定

通过间接ELISA方法对杂交瘤细胞进行筛选，确认其分泌的抗体能够与新城疫病毒特异性结合。经过多次亚克隆后，最终获得多株特异性单克隆抗体，例如7G5、1C1、8G10、4A8和5F9。这些抗体的亚类检测结果分别为IgG1、IgG1、IgG1、IgG2b和IgG1，均为k链。

4.效价测定

利用腹水制备的抗体进行效价测定，结果显示这些单克隆抗体的间接ELISA效价分别达到1:16000、1:1000、1:2000、1:4000和1:8000，表明它们具有较高的灵敏度和特异性。

二、双抗体夹心ELISA方法的建立

1.包被抗体

将制备的单克隆抗体作为一抗，用碳酸盐缓冲液稀释至最适浓度（通常为1～10μg/ml），然后加入96孔酶标板中，每孔0.3ml。在4℃过夜或37℃水浴3小时后，移去包被液，用含0.05%吐温20的洗涤缓冲液洗涤三次，每次5分钟。

2.加样与孵育

将待测样品（如血清、血浆或组织提取液）稀释后加入酶标板，每孔0.2ml，37℃孵育1～2小时。孵育后，用洗涤缓冲液再次洗涤三次。

3.加入酶标抗体

加入稀释后的酶标记特异性抗体，每孔0.2ml，37℃孵育1～2小时。同样，孵育后用洗涤缓冲液洗涤三次。

4.底物显色与检测

加入底物溶液（如OPD或TMB），室温下反应30分钟，通过酶标比色计测定吸光度值。吸光度值与待测抗原的浓度呈正相关。

新城疫病毒单克隆抗体的制备和双抗体夹心ELISA方法的建立为新城疫的快速、准确诊断提供了强有力的工具。这些方法不仅提高了检测效率，还显著降低了假阳性或假阴性的可能性，对于新城疫的防控具有重要意义。

二、双抗体夹心ELISA方法的建立

1.抗原包被

将制备的单克隆抗体作为一抗，利用碳酸盐缓冲液稀释至适当浓度（通常为1～10g/ml），然后均匀加入96孔酶标板中，每孔加入0.3ml。将酶标板置于4℃过夜或37℃孵育3小时，使抗体充分结合到酶标板表面。随后，移去包被液，并用含0.05%吐温20的洗涤缓冲液清洗三次，每次5分钟，以去除未结合的抗体。

2.样品孵育

将待测样品（如血清、血浆或组织提取液）按照一定比例稀释后，加入酶标板，每孔加入0.2ml。将酶标板置于37℃孵育1～2小时，使样品中的新城疫病毒抗原与包被抗体结合。孵育后，同样用洗涤缓冲液清洗三次，以去除未结合的抗原和其他杂质。

3.酶标抗体孵育

加入稀释后的酶标记特异性抗体，每孔加入0.2ml。该抗体将与样品中的新城疫病毒抗原结合，形成“夹心”结构。将酶标板置于37℃孵育1～2小时，使酶标抗体充分结合。孵育后，用洗涤缓冲液清洗三次，以去除未结合的酶标抗体。

4.底物显色与检测

加入底物溶液（如邻苯二胺或四甲基联苯胺），室温下反应30分钟。底物在酶的作用下发生降解，产生有色产物。通过酶标比色计测定吸光度值，吸光度值与待测样品中的新城疫病毒抗原浓度呈正相关。根据标准曲线，可以定量测定样品中的新城疫病毒含量。

三、双抗体夹心ELISA方法的优势与注意事项

1.优势

高灵敏度：双抗体夹心ELISA方法能够检测到低浓度的抗原，适用于早期感染的诊断。

特异性强：通过使用特异性单克隆抗体，能够避免与其他病毒的交叉反应，提高检测的准确性。

操作简便：实验步骤相对简单，易于标准化和自动化，适合大规模样本的检测。

2.注意事项

抗体选择：确保使用的单克隆抗体具有高特异性和亲和力，以避免假阳性或假阴性结果。

温度控制：孵育和洗涤过程中的温度和时间需要严格控制，以确保实验结果的稳定性。

底物选择：根据实验需求和检测灵敏度选择合适的底物，并注意底物的稳定性。

质量控制：在每次实验中设置阳性对照和阴性对照，以验证实验的可靠性和重复性。

新城疫病毒单克隆抗体的制备和双抗体夹心ELISA方法的建立为新城疫的快速、准确诊断提供了强有力的工具。这些方法不仅提高了检测效率，还显著降低了假阳性或假阴性的可能性，对于新城疫的防控具有重要意