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【2017年整理】基因工程实验手册.doc

发布:2017-02-12约1.12万字共20页下载文档
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《本科实验教学》 基因工程实验指导 贵州大学农业生物工程研究院 2015年4月 实验一DNA片断的连接、转化及酶切鉴定 一、实验原理: 实验所用载体为Promega公司T载体pGEM?-T Easy Vector,特点为在载体中存在两个T末端。 使用LA Taq进行扩增得到的大部分PCR产物3’端附有一个“A”碱基。 T4噬菌体DNA连接酶可在体外使外源DNA片段和线状质粒载体之间形成新的3,5磷酸二酯键。PCR胶回收产物游离A末端与载体的T末端可互补配对并在连接酶作用下连接形成重组质粒。 转化指将质粒DNA或以其为载体构建的重组DNA分子导入受体细胞体内,使之获得新的遗传特性的一种方法。大肠杆菌转化常用化学法(CaCl2法),其原理是培养至对数生长期的细菌0℃经过低渗CaCl2溶液,抗DNase的羟基-钙磷酸复合物粘附于细胞表面,经42℃短时处理,促使细胞,。本实验中本身具有Amp抗性 对培养的含有大量质粒的菌液,离心收集菌体。用含有一定浓度葡萄糖的缓冲液(溶液Ⅰ)悬浮菌体,采用碱性SDS(十二烷基硫酸钠)溶液裂解菌体的细胞壁,使质粒缓慢释放出来,同时整个液体的pH为12-12.5,双链DNA变成单链,当pH调至中性并有高盐浓度存在下,绝大多数变形质粒恢复自然状态溶在液体中,而变形染色体不能复性,断裂呈线性的单链细菌染色体DNA 相互交联缠绕附着在细胞壁碎片上与蛋白质形成沉淀,离心获得含有大量质粒的上清液,再利用适当浓度的亲水性有机溶剂(乙醇、异丙醇)使质粒DNA脱水,离心等到质粒沉淀。 限制性内切酶能识别并切割特异位点的DNA序列。其被广泛应用于载体构建。的质粒DNA,利用限制性内切酶EcoR I(GAATTC)进行酶切,可将目的基因切下。酶切结果可通过琼脂糖凝胶电泳进行检测。 pGEM?-T Easy Vector(Promega)α感受态细胞 三、实验仪器 PCR仪、制冰机、水浴锅、37℃摇床、离心机、涡旋振荡器、电泳槽 四、实验试剂 SolutionⅠ(0-4℃保存):50mmol/L 葡萄糖;25mmol/L Tris·Cl(pH8.0);10mmol/L EDTA(pH8.0) SolutionⅡ(现配现用):0.2mol/LNaOH;1% SDS SolutionⅢ(0-4℃保存):0.2mol/L KAC 60mL;冰乙酸 11.5ml;ddH2O 28.5ml(pH4.8) Rnase: 100mg Rnase粉剂,溶于10ml 10mmol/L Tris·Cl(pH7.5), 15mmol/L NaCl缓冲液中,水浴煮沸15min,冷却,-20℃保存。 五步骤L pGEM?-T Easy Vector 1.0μL PCR产物 3.0μL T4 DNA连接酶 1.0μL ddH2O 4.0μL 用移液枪吹打连接反应使之混匀后,4℃孵育过夜。 2.连接产物转化大肠杆菌 (1)(2)L感受态细胞至新的1.5mL离心管中。 (3)向感受态细胞中加入0.1ng-10ng(约7ul)转化用DNA,轻轻混匀后冰中放置30min。 (3)4245s后,立即冰中放置2min。 (4)加入890μL 37℃预温的LB培养基。 (5)37℃,200rpm振荡培养1h,4000×g,室温离心1min。 (6)倒掉上清,向沉淀中加入100μLLB液体培养基后充分混匀,取30μL悬浮菌液涂布于LB抗性平板(2% X-Gal:40μL;24mg/mL IPTG:7μL;100mg/mL Amp:30μL)。 (5)3712-16h,挑选白色单菌落扩增培养。 3.质粒DNA的提取 (1)将含有目的基因的阳性克隆mL离心管中,10,000×g,4℃,离心1min,倒掉上清液。重复操作L的SolutionⅠ,涡旋震荡,直至没有沉淀。 (4)加入200μL SolutionⅡ,轻柔的上下翻转离心管数次,使之混匀,冰中放置3min(加入SolutionⅡ后在冰上放置不要超过5min)。 (5)加入150μL SolutionⅢ后立刻混匀,冰中放置3min。 (6)100rpm,4℃,离心10min,将上清液转移到另一离心管中。 (7)加入2倍体积的无水乙醇(约700μL),颠倒离心管数次以混合,-20℃放置20min。 (8)10,000rpm,4℃,离心10min,弃上清液。 (9)加入1mL 70%乙醇洗涤DNA沉淀。 (10)去掉上清液,倒扣于吸水纸上几分钟,在空气中使沉淀干燥或真空抽干,干燥的标志为白色沉淀变为半透明或透明。 (11)加入18μL ddH2O溶解沉淀,加2μL RNase(100?g/mL),使RNA酶终浓度为20?g/mg,振荡,37℃度保温40分钟。 (12
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