兔胚染色体的简易制备技术①.pdf
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遗传 HEREDITAS(Beijing)16(5):43-441994
·实验技术与方法 ·
兔 胚 染 色 体 的 简 易 制 备 技 术①
刘 林 安 民 王莉莉
(it京农业大学畜牧系动物繁殖教研室 100094)
AnImprovedMethodforChromosomePreparationsofRabbit
PreimplantationEmbryos
LiuLin AnMin WangLili
(DepartmentofAnimalScience,BeijingAgriculturalUniversity100094)
对动物早期胚胎染色体进行分析,对于早期胚胎发育、孤雌生殖发育、多倍体发育、体外受精、胚胎性别鉴
定、胚胎细胞核移植、嵌合休分析、染色体原位杂交、遗传上变异的诱发及胚胎早期流产的原因分析等研究,均
有十分重要的意义.然而,用现在的压片法或空气千燥法制备兔胚胎染色体 (4,卜,·’叼”,常存在胚胎丢失,染色体
分散不好或严重丢失,分裂相极少,或难以获得适合于分析的适度收缩长度的中期染色体等问题,成为分析胚胎染
色体的主要障碍.另外,操作繁琐、制片时间长、重复性不好也影响分析.本文对兔桑棋胚及囊胚染色体标本制
作技术进行反复多次摸索,形成了重复性好、快速、简便的兔附植前胚胎染色体标本制备方法,并对体外培养的兔
胚胎染色体组型进行了分析.
1材 料 与 方 法
1.1胚胎来源
实验动物为健康的性成熟青年大耳白兔或青紫蓝兔,超数排卵或自然发情后交配.用改良的DPBS冲洗输卵
管,收集不同成熟时期的胚胎,置含 10%小牛血清的TCM-199(Gibco)的5如1小液滴中,其上彼盖有石蜡油,于
5%CO:湿度空气、38℃培养箱中培养,至桑桩期或囊胚期,或直接从子宫中收集胚胎.
1.2胚胎染色体制备步骤
1.2.1培养 将胚胎置于含0.1pg/ml秋水仙胺 (B(oehringer)的上述50uj1培养小液滴上(覆盖液体石蜡)中培养
4小时,条件同上.
1.2.2酶消化 将胚胎移置0.25胰蛋白酶D(ifco)(pH0)或用0.5%链霉蛋白酶(Boehringer)在38℃条件下消
化5-10分钟,这时粘蛋白层完全去掉,透明带部分消化,形状变薄、膨大到适度.然后,在PBS中洗2-3次.
1.2.3低渗 在0.075mol/L氯化钾中浸洗片刻,再将胚胎移置0.2ml该低渗液中,38℃条件下低渗15分钟.
1.2.4预固定 于甲醇:冰乙酸:双蒸水(4(:1:5)预固定液中预固定5-20分钟,可见胚胎单个细胞变为透明.然后
将1枚或2枚胚胎置于洁净酸(洗)的载玻片上,所附带的预固定液尽量少.
1.2.5固定 待上述预固定液快干燥前,将3:1的甲醇:冰乙酸固定液小液滴约(50川)迅速滴置胚胎上,待固定液
快干燥、胚胎刚显现时,再加 1或2滴固定液,可见胚胎细胞散开;同时,轻轻向胚胎部分吹气,使染色体分散更
①本文得到国家教委博士点基金的资助.宁国杰副教授给予热情指导,作者表示衷心感谢.
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好.再置于 38C1湿度温箱中干燥.
1.2.6染色 用1:20的Giemsa原液:0.2moi/LPBS(pH=6.8)扣染15分钟,水洗、镜检及照相.上述操作主
要在体视显微镜下进行.
2结 果 与讨 论
21低渗及处理时间
欲获得分散理想的分裂相,低渗是关键.实验摸索了低渗溶液的种类及时间,发现1%,0.9%,0.8%的柠檬
酸三钠效果比0.075mol/LKCl差,而且0.075mol/LKCl低渗处理时间以巧分钟为宜包(括在低渗液中浸洗时
间).不过,每次所用KCl溶液应新配制.
2.2秋水仙肤浓度及处理时间
为了获得既具有适度长度染色体,又F育一定数量的中期分裂相,对秋水仙胺适宜的浓度及处理时间浓(度为
1,0.4,0.1及0.05pg/ml;时间2,4,6及8小时)进行试验.结果,秋水仙胺浓度为0.lAJg/ml,处理时间为4
小时最为适宜见(图版I,1).0.4u,g/ml,处理4小时,分裂相增多,但染色体长度稍短,位于中后期较多,可做组型
分析,但
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